<p>肝细胞培养是研究肝细胞生物学和疾病发生机制的重要方法之一。在进行肝细胞培养之前,需要进行一系列的准备工作,包括获取大鼠肝细胞、准备培养器材和培养基等。本文将详细介绍这些准备工作的步骤和注意事项。</p><div class="image-package"><img src="https://upload-images.jianshu.io/upload_images/29008475-055c7f7b08100662.jpeg" img-data="{"format":"jpeg","size":1075675,"height":1944,"width":2592}" class="uploaded-img" style="min-height:200px;min-width:200px;" width="auto" height="auto"/>
</div><p>一、获取大鼠肝细胞
获取大鼠肝细胞是进行肝细胞培养的第一步。一般情况下,我们采用胶原酶灌注法来分离大鼠肝细胞。具体步骤如下:
1. 首先,将大鼠用**麻醉,取出肝脏并放入离心管中。
2. 加入适量的DMEM低糖培养基,并用离心机离心10分钟,将上清液弃掉。
3. 用PBS洗涤肝脏,去除胆管和血管等。
4. 用1mg/mL的胶原酶A(Sigma C0130)溶液灌注肝脏,将肝脏放在37℃恒温摇床上振荡30分钟。
5. 滤过灌注液,得到肝细胞悬液。
6. 用完整DMEM高糖培养基冲洗肝脏悬液,并离心5分钟,将上清液弃掉。
7. 加入完整DMEM高糖培养基,调整细胞密度为1×106/mL。
注意事项:
1. 需要使用无菌的器材和培养基,以保证细胞的纯度和生长状态。
2. 在灌注胶原酶之前,需要预热好含胶原酶的培养基,以保证灌注液的温度和浓度均匀。
3. 灌注液的pH值需要控制在7.4左右,过低或过高都会影响细胞的生长。
4. 振荡时间不宜过长,否则会影响细胞的活力。</p><div class="image-package"><img src="https://upload-images.jianshu.io/upload_images/29008475-47fcf18453342b34.jpeg" img-data="{"format":"jpeg","size":1091830,"height":1944,"width":2592}" class="uploaded-img" style="min-height:200px;min-width:200px;" width="auto" height="auto"/>
</div><p>二、准备培养器材
进行肝细胞培养还需要准备一系列的器材,包括培养皿、离心管、试管、移液器等。这些器材需要经过严格的清洗和消毒处理,以保证无菌状态。
1. 清洗:将器材用去离子水清洗干净,去除污物和残留物。然后用70%乙醇浸泡至少30分钟,再用去离子水清洗干净。
2. 消毒:将器材放入自封袋中,用高压蒸汽灭菌器进行灭菌处理。处理时间和温度根据器材种类和大小而定,一般为121℃,15-20分钟。
3. 储存:消毒后的器材需要放在干燥、无菌的环境中储存,以免再次被污染。
注意事项:
1. 器材的清洗和消毒必须严格按照操作规程进行,以保证无菌状态。
2. 不同种类的器材需要使用相应的清洗和消毒方法,不能混用。
3. 消毒后的器材需要使用无菌的手套和钳子取出,以避免再次被污染。
三、准备培养基
培养基是肝细胞培养的重要组成部分,需要选择适合肝细胞生长的培养基,并根据实验需要添加相应的生长因子和药物等。一般情况下,我们使用DMEM高糖培养基,添加10%的胎牛血清和1%的抗生素。
具体步骤如下:
1. 取出DMEM高糖培养基和胎牛血清,放置于37℃恒温水浴中预热。
2. 加入1%的抗生素,如青霉素和链霉素等。
3. 搅拌均匀,过滤灭菌。</p><div class="image-package"><img src="https://upload-images.jianshu.io/upload_images/29008475-b532b6ef5cb5c6f2.jpeg" img-data="{"format":"jpeg","size":880923,"height":1944,"width":2592}" class="uploaded-img" style="min-height:200px;min-width:200px;" width="auto" height="auto"/>
</div><p>注意事项:
1. 培养基的配制需要按照操作规程进行,以保证培养基的成分和浓度准确无误。
2. 培养基的配制和保存需要在无菌条件下进行,避免被污染。
3. 不同的细胞类型需要选择适合其生长的培养基,不能通用。
四、培养肝细胞
在完成肝细胞的分离、器材的准备和培养基的配制后,可以进行肝细胞的培养。具体步骤如下:
1. 将分离得到的肝细胞悬液加入培养皿中,放入37℃恒温培养箱中培养。
2. 第一天不需要更换培养基,第二天更换一次培养基。
3. 每2-3天更换一次培养基,直到细胞密度达到80%左右。
4. 在细胞密度达到80%左右时,可以进行下一步实验。
注意事项:
1. 培养皿和培养基需要在无菌条件下操作,以避免细胞被污染。
2. 更换培养基的时候需要小心,避免对细胞造成机械损伤。
3. 细胞密度过高或过低都会影响细胞的生长状态和实验结果,需要掌握好适宜的细胞密度。
总结:
以上是进行肝细胞培养前的准备工作的详细步骤和注意事项。进行肝细胞培养前,需要准备好无菌的器材和培养基,并按照操作规程进行清洗、消毒和储存。获取肝细胞的方法是采用胶原酶灌注法分离肝细胞。进行肝细胞的培养需要掌握好适宜的细胞密度和更换培养基的时机,避免对细胞造成损伤和影响实验结果。
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大鼠肝细胞培养技术,培养器材和培养基技巧不可缺!
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