首先华大没有给我塞钱，最近有用华大的测序，就学习了一下。
华大的测序技术起源于 CG(Complete Genomics) 的 cPAL(combinatorial Probe-Anchor Ligation) 测序。
CG 的 cPAL 测序的建库称为 DNB(DNA Nanoballs), 利用 RCA(Rolling circle replication) 让 DNA 扩增成线性的螺旋结构。这个建库方式优点是所有的扩增模板都是最初的插入片段，这样 PCR 产生的错误不会累积，只影响该扩增序列。像 ILLUMINA 的测序如果扩增发生错误，那么后续扩增会有该错误片段作为模板，从而导致错误累积。
文库构建后加入到测序芯片，测序芯片有 DNB 结合位点，一个位点结合一个 DNB.
然后是 cPAL 测序。每轮测序先加入与接头匹配结合的锚序列（anchor sequence），然后加入大量只有一个荧光标记碱基的探针，该荧光标记碱基在探针的位置由需要测序的位置决定，比如要测第一个碱基，那么就只标记探针第一个碱基，要测第五个碱基就荧光标记探针第五个碱基。探针结合后洗去未结合的探针，然后检测应该信号，得到序列信息。然后移除所有的结合探针和锚序列，开始下一轮测序。对比 ILLUMINA 的 SBS 测序，优点是下一个碱基不依赖于上一碱基，这样测序错误更加随机。
后来的 BGISEQ-500 仪器使用改进自 cPAL 的 cPAS(combinatorial probe-anchor synthesis) 技术，具体这个 cPAS 技术细节我没找到合适材料，但我猜测应该是类似于 ILLUMINA 的 SBS. 有资料的朋友欢迎分享。
MGISEQ-2000 依旧使用 DNB 建库，但是测序应用了 CoolMPS 新技术。这是一种基于抗体的技术，荧光标记在抗体上，而不是 dNTP 碱基上（因此称为 cold dNTPs）。这解决了 ILLUMINA 平台在 dNTP 添加荧光基团会导致 DNA “疤痕” 影响后续测序准确度。
CoolMPS 技术如下示意。对比 ILLUMINA SBS 主要改进就是将荧光基团标记在抗体上，让抗体跟碱基特异性结合，从而测序更准确。另外，抗体可携带多个荧光基团，让荧光信号更强。
那么 DNB 建库后用 CoolMPS 的双端测序是怎么一个过程呢？如下所示，A 进行 Read1 的引物结合并测序；B 在 Read1 完成后继续合成序列，直到下一段序列的 5' 端。C 新合成序列 3' 端到达下一序列 5' 端后，5' 端被置换形成分叉；D 在分叉上进行 Read2 测序。
下图显示 CoolMPS 测序前 2 碱基对被测碱基信号影响小。
参考资料
Chen, Fei, et al. "The history and advances of reversible terminators used in new generations of sequencing technology." Genomics, Proteomics & Bioinformatics 11.1 (2013): 34-40.
Drmanac, Snezana, et al. "CoolMPS™: Advanced massively parallel sequencing using antibodies specific to each natural nucleobase." bioRxiv (2020).
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