A. 条件性Cre重组酶模型
1 使用CDX2启动子驱动Cre重组酶表达，特异性作用于远端回肠、盲肠和结肠上皮
2 将携带floxed Apc基因的小鼠与CDX2P-NLSCre小鼠交配，Cre重组酶介导Apc基因在肠道上皮的特异性敲除，3周后监测结肠特异性肿瘤形成。
B. 他莫昔芬诱导模型
构建CDX2-Cre-ERT2转基因小鼠与floxed Apc基因的小鼠杂交，腹腔注射他莫昔芬（75 mg/kg，连续3-5天），热休克蛋白释放Cre-ERT2进入细胞核，激活重组酶介导APC基因敲除。通过结肠镜或直肠出血症状监测肿瘤。
C. AOM/DSS诱导模型
腹腔注射致癌剂AOM（10-12 mg/kg）；5天饮用含2% DSS的水（每2天更换），恢复常规饮水14天为一个周期；重复2个DSS处理周期。观察腹泻、便血、体重变化等临床症状。实验终点解剖检查结直肠息肉/肿瘤。
异种移植模型
A. 皮下移植模型
免疫缺陷小鼠（裸鼠/NSG）准备，CRC细胞悬液（PBS配制）注射至侧腹皮下，定期测量肿瘤体积（游标卡尺）。终点取瘤称重并进行分子分析（IHC/WB/qPCR）
B. 原位移植模型
荧光标记CRC细胞（如luciferase），开腹手术暴露盲肠；细胞悬液注射至盲肠浆膜层；活体成像监测肿瘤生长（IVIS系统注射D-luciferin）；结肠镜定期评估肿瘤进展。
C. 患者来源异种移植（PDX）
手术获取患者肿瘤组织；机械/酶解处理成细胞悬液或3D类器官；传代3次建立稳定模型，移植至NSG小鼠盲肠原位；用于个性化药物敏感性测试。
治疗应用模型
A. 同源皮下模型
从转基因小鼠（如ApcMin/+）分离CRC细胞，注射至同品系免疫健全小鼠皮下，研究肿瘤-免疫系统相互作用，测试免疫检查点抑制剂疗效。
B. 原位治疗模型
建立稳定原位肿瘤后随机分组，通过灌胃/腹腔注射给药，动态监测肿瘤标志物（如CEA），终末采集肿瘤组织进行病理分级，同步分析转移灶（常见于肝/肺）。
总结于文献：“ Colorectal cancer murine models: Initiation to metastasis ”，《cancer letter》。
