作者,Evil Genius
马上又要接触这个社会的险恶了,但愿自己能抗得住。
今天继续分享一些Atera的项目经验。
目前手里只有一个Atera的项目,客户要求是很高的,当然也是积累经验的绝佳机会。

Atera 在细胞 niche、细胞邻域与空间亚群分析中的应用与提升
一、Atera 的核心价值:从空间表达图谱走向细胞生态位解析
Atera与传统的空间转录组分析相比,它的主要技术方向是将全转录组检测、细胞级表达分析和组织空间定位结合起来。厂商公布的 Atera WTA 方案覆盖约 18,000 个蛋白编码基因,并强调较高通量和亚细胞尺度的转录本定位能力。
首先回顾以下几个层次的问题:
细胞是什么? 识别中性粒细胞、单核/巨噬细胞、T 细胞、B 细胞、内皮细胞等。
细胞处于什么状态? 判断细胞是否表现出炎症激活、吞噬、抗原呈递、免疫抑制或组织修复等表达程序。
细胞周围是谁? 解析特定细胞与周围其他细胞形成的邻域组合。
细胞在哪里、为什么在那里? 识别具有特定空间分布和表达特征的细胞群及其潜在生态位。
这四个层次可以进一步组织成一条分析主线:
1、全转录组原位检测
基因表达、转录本坐标、组织形态
2、细胞分割与细胞类型注释
细胞边界、表达矩阵、细胞状态
3、细胞邻域与空间亚群识别
空间距离、邻居组合、局部表达状态
4、Niche 解析与机制验证
差异通路、空间共定位、候选细胞互作
这里有一个关键区别:Atera 提供的是更丰富的空间分子测量基础;niche、邻域和空间亚群仍需要通过下游算法与统计检验定义,并不是平台检测后自动得到的确定性生物学结论。
二、细胞 niche 分析:从细胞组成走向局部功能微环境

2.1 什么是细胞 niche?
细胞 niche 通常可以理解为组织中具有一定空间范围、细胞组成和分子功能特征的局部微环境。一个 niche 可能包含多种细胞类型,也可能由同一种细胞的不同功能状态共同构成。
例如,在炎症组织中,可以探索:
炎症细胞富集区域;
血管周围的免疫细胞区域;
抗原呈递细胞与 T 细胞共同富集的区域;
具有吞噬和组织修复特征的髓系细胞区域。
需要注意,niche 并没有一个适用于所有研究的统一定义。不同研究可以根据细胞组成、空间邻近关系、基因表达程序或组织学结构来定义生态位,因此必须说明所采用的判定标准。
2.2 Atera 的潜在优势是什么?
第一,能够同时利用细胞身份与细胞状态信息。
如果仅使用少量标志基因,某个区域可能被注释为“巨噬细胞富集区域”。但巨噬细胞在不同组织和疾病状态下可能具有不同的转录程序。
全转录组信息有机会进一步区分:
炎症相关的单核/巨噬细胞;
吞噬与溶酶体功能较活跃的细胞;
抗原呈递相关状态;
组织修复或免疫调节相关状态。
这些类别必须依据实际表达数据和合适的标志基因确定,不能仅根据细胞所在的位置直接推断。
第二,有机会识别由相同细胞类型构成、但功能不同的 niche。
例如,两个组织区域都包含巨噬细胞、T 细胞和内皮细胞,但一个区域可能富集炎症相关表达程序,另一个区域则更偏向组织修复。仅比较细胞类型比例,可能难以揭示这种差异。
第三,有利于探索未预先设定的分子特征。
与仅检测预选基因的方案相比,全转录组设计有利于探索面板外的候选标志基因和表达程序。但实际发现能力仍受检测灵敏度、细胞分割、组织质量和数据分析方法影响。
2.3 建议的 niche 分析流程

步骤 1:建立细胞图谱
完成细胞分割、质控、标准化、聚类和细胞类型注释,保留每个细胞的空间坐标及表达矩阵。

步骤 2:定义候选生态位
根据细胞组成、局部空间结构和表达状态,识别候选区域或局部细胞群。可以考虑空间图聚类、局部细胞组成统计或 niche 专用算法。

步骤 3:解释生态位功能
对不同 niche 进行差异表达和通路富集,分析炎症、免疫活化、细胞黏附、吞噬、血管相关过程等是否存在差异。

步骤 4:跨样本验证
检查候选 niche 是否在独立样本中重复出现,评估其组成和功能特征是否稳定,并排除由组织结构、样本质量或细胞密度造成的假象。
三、细胞邻域分析:识别谁与谁共同构成局部微环境

3.1 细胞邻域与 niche 有什么不同?
两者关系密切,但不是同一个概念。
细胞邻域(cellular neighborhood) 更强调一个细胞周围的邻居是谁,以及邻居的组合如何变化。
细胞 niche 更强调一个局部微环境整体的细胞组成、表达状态和潜在功能。
例如,以某个巨噬细胞为中心,在其周围一定距离内统计邻居,发现该区域主要包含中性粒细胞、T 细胞和内皮细胞。这可以定义为一种候选邻域类型。
如果进一步发现这类邻域在多个样本中重复出现,并且富集特定炎症表达程序,就可以进一步讨论其是否构成一种炎症相关 niche。
3.2 Atera 可能带来的提升
1. 更丰富的细胞状态特征。 除了邻居的细胞类型,还可以利用每个细胞的基因表达特征,比较同一种邻域内的细胞是否具有不同的功能状态。
2. 更细致地分析稀有细胞参与的邻域。 如果某种稀有细胞被可靠地检测和分割,便有机会分析它是否集中出现在某类局部细胞组合中。这里的关键是稀有细胞的检测可靠性,而不是单纯的全转录组覆盖。
3. 将邻域组成与邻域功能联系起来。 例如,可以同时研究一个邻域中的髓系细胞比例,以及这些细胞的炎症相关表达程序,从而区分“细胞数量变化”和“细胞状态变化”。
3.3 推荐的分析方法
| 分析方法 | 核心用途 | 主要输出 |
|---|---|---|
| 半径邻域分析 | 统计指定距离内的细胞组成 | 邻域组成矩阵 |
| k 近邻图(kNN) | 为每个细胞寻找空间邻居 | 空间邻接图 |
| 邻域聚类 | 将具有相似局部细胞组成的区域分组 | 邻域类别 |
| 邻域差异丰度分析 | 比较不同疾病组的邻域数量或比例 | 差异邻域 |
| 邻域表达分析 | 比较不同邻域中的细胞表达状态 | 差异基因与通路 |
实际分析时,应当对邻域半径、k 值、细胞分割参数进行敏感性分析。不同尺度可能回答不同问题:较小的邻域强调直接接触附近的细胞,较大的邻域则可能反映更广泛的组织微环境。
尤其需要注意:空间相邻不等于直接接触,更不等于发生了功能性信号传递。 若研究细胞互作,应结合配体—受体表达、空间距离、表达程序和其他独立证据。
四、空间亚群分析:同一种细胞能否进一步分出不同的空间状态?

4.1 传统细胞亚群分析的局限
在常规单细胞 RNA 测序中,细胞通常根据表达矩阵进行降维和聚类。这样可以发现不同细胞亚群,但细胞的原始组织坐标通常无法保留。
空间转录组则允许继续追问:
同一种细胞的不同亚群是否位于不同组织区域?
某个亚群是否更集中于血管附近或炎症区域?
同一种细胞在不同空间位置是否具有不同的基因表达程序?
某个亚群是否只出现在特定的细胞邻域中?
这就是空间亚群分析的价值。
4.2 Atera 在这方面的潜在提升
Atera 的全转录组检测设计有望减少对预设基因集合的依赖,可以在同一种细胞内部,利用更多基因特征识别潜在的功能状态。
例如,将单核/巨噬细胞作为一个大类,可以进一步分析:
炎症相关亚群;
吞噬和溶酶体功能相关亚群;
抗原呈递相关亚群;
组织修复或免疫调节相关亚群。
随后将亚群映射回组织坐标,比较它们是否存在不同的空间分布,并进一步分析这些亚群周围的细胞组合。
但必须避免将空间位置直接当作亚群定义依据。可靠的空间亚群通常需要同时满足表达特征可区分、空间分布具有可解释性,以及结果在样本之间具有一定可重复性。
4.3 推荐的空间亚群分析路线
第一步:确定主要细胞类型
例如先提取全部髓系细胞,再单独分析单核/巨噬细胞。
第二步:在细胞类型内部聚类
结合差异基因、经典标志基因和通路特征确定候选状态。
第三步:将亚群映射回组织
绘制组织空间图,比较各亚群的空间分布和富集区域。
第四步:结合邻域和生态位分析
分析亚群周围有哪些细胞、局部表达程序是否不同,以及候选互作是否具有空间支持。
五、Atera、Visium HD 与 Xenium 5K:应该怎样理解差异?

三种平台的差别,不能简单概括成一个绝对的“谁更好”,而应结合研究目标和具体数据质量判断。
| 维度 | Atera WTA | Visium HD | Xenium Prime 5K |
|---|---|---|---|
| 测量策略 | 原位全转录组检测 | 测序型空间表达检测 | 预设基因面板原位检测 |
| 基因发现 | 适合探索广泛表达特征 | 适合广泛表达特征探索 | 受预选靶标范围限制 |
| 空间数据单位 | 细胞分割后形成细胞表达矩阵,并保留转录本空间信息 | 高密度空间 bin,可进行细胞级推断或分割分析 | 原位转录本定位及细胞分割 |
| 邻域分析 | 依赖细胞分割和空间图 | 可基于 bin 或推断细胞构建空间图 | 可基于细胞坐标和细胞类型构建空间图 |
| 主要潜在优势 | 全转录组发现与细胞空间分析结合 | 广泛的空间表达图谱 | 对预设目标进行高分辨率原位检测 |
| 关键限制 | 需要验证检测灵敏度与细胞分割质量 | bin 不等于真实细胞,细胞归属需谨慎 | 面板之外的未知转录特征难以直接检测 |
Atera 的潜在优势在于把较广的基因覆盖与细胞级空间分析结合起来,尤其适合提出新的细胞状态和局部微环境假设。不过,是否能比另外两种平台识别出更多可信的空间亚群,需要在匹配组织、相近质量控制标准下直接验证。
总结
Atera 对细胞 niche、邻域和空间亚群分析的主要潜在提升,可以归纳为三点:
更广的分子特征: 有利于从细胞类型进一步探索细胞功能状态和未知表达程序。
细胞与空间信息结合: 有机会把细胞状态、空间邻居和组织局部环境联系起来。
更完整的分析链条: 从细胞注释延伸到邻域组成、空间亚群、生态位差异和候选互作机制。
但这些提升不是由基因数量单独决定的。真正决定研究质量的,仍然是转录本检测质量、细胞分割准确性、样本重复性、空间分析尺度以及统计验证。