加载表达矩阵和生存数据
rm(list=ls())
options(stringsAsFactors = F)
Rdata_dir='Rdata/'
Figure_dir='figures/'
# 加载上一步从RTCGA.miRNASeq包里面提取miRNA表达矩阵和对应的样本临床信息。
load( file =
file.path(Rdata_dir,'TCGA-KIRC-miRNA-example.Rdata')
)
dim(expr)
dim(meta)
# 可以看到是 537个病人,但是有593个样本,每个样本有 552个miRNA信息。
# 当然,这个数据集可以下载原始测序数据进行重新比对,可以拿到更多的miRNA信息
# 这里需要解析TCGA数据库的ID规律,来判断样本归类问题。
group_list=ifelse(as.numeric(substr(colnames(expr),14,15)) < 10,'tumor','normal')
table(group_list)
exprSet=na.omit(expr)
table(group_list)
exprSet=na.omit(expr)
dim(exprSet)
load( file =
file.path(Rdata_dir,'TCGA-KIRC-miRNA-survival_input.Rdata')
)
dim(exprSet) ## remove the nomral
head(phe)
exprSet[1:4,1:4]
head(colnames(exprSet))
head(phe$ID)
## 必须保证生存资料和表达矩阵,两者一致
all(substring(colnames(exprSet),1,12)==phe$ID)
进行lasso回归,找到最佳建模位置
library(lars)
library(glmnet)
x=t(log2(exprSet+1))#归一化
y=phe$event
#用基因的表达情况预测生死
model_lasso <- glmnet(x, y, family="binomial", nlambda=50, alpha=1)#拉手回归模型
print(model_lasso)
# 列%Dev代表了由模型解释的残差的比例,对于线性模型来说就是模型拟合的R^2(R-squred)。
# 它在0和1之间,越接近1说明模型的表现越好,
# 如果是0,说明模型的预测结果还不如直接把因变量的均值作为预测值来的有效。
head(coef(model_lasso, s=c(model_lasso$lambda[29],0.009)))
#找到最有意义的一个点纳入模型,就是说没有把所有基因都放入模型里面,只是找到了放入基因数使得模型最好的那个点
#这个29是用眼睛看来的,我们可以用下面第三个代码划线来看
plot.glmnet(model_lasso, xvar = "norm", label = TRUE)
plot(model_lasso, xvar="lambda", label=TRUE)
cv_fit <- cv.glmnet(x=x, y=y, alpha = 1, nlambda = 1000)
plot.cv.glmnet(cv_fit)
# 两条虚线分别指示了两个特殊的λ值:
c(cv_fit$lambda.min,cv_fit$lambda.1se)
再用得到的最佳的位置去建模
#再用得到的最佳的位置去建模,lASSO可以防止过度拟合
model_lasso <- glmnet(x=x, y=y, alpha = 1, lambda=cv_fit$lambda.1se)
lasso.prob <- predict(cv_fit, newx=x , s=c(cv_fit$lambda.min,cv_fit$lambda.1se) )
re=cbind(y ,lasso.prob)
#得到预测结果
dat=as.data.frame(re[,1:2])
colnames(dat)=c('event','prob')
dat$event=as.factor(dat$event)#画图时需要factor
library(ggpubr)
p <- ggboxplot(dat, x = "event", y = "prob",
color = "event", palette = "jco",
add = "jitter")
# Add p-value
p + stat_compare_means()
#得出预测结果
判断预测结果的准确性
#判断预测结果的准确性
library(ROCR)
library(glmnet)
library(caret)
# calculate probabilities for TPR/FPR for predictions
pred <- prediction(re[,2], re[,1])
perf <- performance(pred,"tpr","fpr")
performance(pred,"auc") # shows calculated AUC for model
plot(perf,colorize=FALSE, col="black") # plot ROC curve
lines(c(0,1),c(0,1),col = "gray", lty = 4 )
后面这段是补充,可以不用看了。。。
fit <- glmnet(x=x, y=y, alpha = 1, lambda=cv_fit$lambda.1se)#构建模型
head(fit$beta)
#一倍SE内的更简洁的模型,是22个miRNA
#fit <- glmnet(x=x, y=y, alpha = 1, lambda=cv_fit$lambda.min)
#head(fit$beta)# 这里是40个miRNA
choose_gene=rownames(fit$beta)[as.numeric(fit$beta)!=0]
#选出用于建模的那些基因
length(choose_gene)
myexpr=x[,choose_gene]
mysurv=phe[,c("days","event")]
mysurv$days[mysurv$days< 1] = 1
# 详细代码参见这个网站https://github.com/jeffwong/glmnet/blob/master/R/coxnet.R#
fit <- glmnet( myexpr, Surv(mysurv$days,mysurv$event),
family = "cox")
#用包自带的函数画图
plot(fit, xvar="lambda", label = TRUE)
plot(fit, label = TRUE)
## 如果需要打印基因名,需要修改函数,这里不展开。
library(pheatmap)
choose_matrix=expr[choose_gene,]
choose_matrix[1:4,1:4]
n=t(scale(t(log2(choose_matrix+1)))) #scale()函数去中心化和标准化
#对每个探针的表达量进行去中心化和标准化
n[n>2]=2 #矩阵n中归一化后,大于2的项,赋值使之等于2(相当于设置了一个上限)
n[n< -2]= -2 #小于-2的项,赋值使之等于-2(相当于设置了一个下限)
n[1:4,1:4]
## http://www.bio-info-trainee.com/1980.html
annotation_col = data.frame( group_list=group_list )
rownames(annotation_col)=colnames(expr)
pheatmap(n,show_colnames = F,annotation_col = annotation_col,
filename = 'lasso_genes.heatmap.png')
library(ggfortify)
df=as.data.frame(t(choose_matrix))
df$group=group_list
png('lasso_genes.pca.png',res=120)
autoplot(prcomp( df[,1:(ncol(df)-1)] ), data=df,colour = 'group')+theme_bw()
dev.off()
## 也可以尝试其它主成分分析的R包,视频就不继续没完没了的讲解了。
library("FactoMineR")
library("factoextra")
## 这里的PCA分析,被该R包包装成一个简单的函数,复杂的原理后面讲解。
dat.pca <- PCA(t(choose_matrix), graph = FALSE) #'-'表示“非”
fviz_pca_ind(dat.pca,repel =T,
geom.ind = "point", # show points only (nbut not "text")只显示点不显示文本
col.ind = group_list, # color by groups 颜色组
# palette = c("#00AFBB", "#E7B800"),
addEllipses = TRUE, # Concentration ellipses 集中成椭圆
legend.title = "Groups"
)