2020-10-23 检材DNA的提取 & 测序知识

检材DNA的提取

  • 基本步骤
  1. 弱碱有螯合剂存在的条件下,进行组织匀浆、溶解细胞膜和核膜。
  2. 去垢剂十二烷基磺酸钠(SDS)蛋白酶K的作用下消化蛋白质,游离出DNA。(去垢剂和蛋白酶作用使DNA和组蛋白分离,DNA分子逐步伸展、缓慢溶解,溶液变得粘稠)
  3. 有机溶剂(常用酚和氯仿混合物)萃取DNA,除去残余蛋白、脂质、糖及细胞杂质等成分。经离心后,有机溶剂留在下层,含DNA的水相在上层,变性蛋白则在两者之间。萃取后可对DNA再进行一次透析,提高DNA的纯度。
  4. 最后,取上层水相,用乙醇沉淀DNA,获得以乳白色丝状沉淀物状态出现的DNA。

注意:
a. 操作动作要温和;保持碱性条件并使用螯合剂EDTA,可有效抑制核酸酶,以保护DNA分子的完整性。
b. 精子DNA由鱼精蛋白包装,精细胞外膜含丰富的硫醇蛋白二硫交联网状结构,能抵抗去污剂和蛋白酶。因此精子DNA的提取比较特殊,除使用SDS和蛋白酶K之外,还应同时加入还原剂二硫苏糖醇(DTT)。

  • 新鲜血液标本DNA提取方法
  1. 取EDTA抗凝血3mL,置于10mL试管中,加入等体积2×蔗糖-TritonX-100缓冲液,颠倒混匀至液体透明。
  2. 3000rpm离心15min,去上清,留沉淀。
  3. 将沉淀物移入匀浆器中,加0.5mL EDTA·Na2溶液,匀浆。
  4. 匀浆液移至10mL试管中,加入1/10体积的10% SDS和蛋白酶K 75μL(终浓度100μg/mL),缓慢转动混匀。
  5. 37℃水浴4~6h。
  6. 加入等体积(1.5mL)饱和酚,缓慢混匀5min。
  7. 3000rpm离心10min,取上层水相,移至另一试管中。
  8. 1:1酚和氯仿1.5mL提取1次,重复步骤7。
  9. 加等体积(1.5mL)氯仿混匀5min,3000rpm离心10min,将上层水相移至小烧杯内。
  10. 加NaCl至终浓度为0.3mol/L,混匀,再加2.5倍体积冷无水乙醇,混匀,得到团块状DNA沉淀。
  11. 将DNA沉淀移至1.5mL的Ep管中,加1mL 70%乙醇漂洗,8000rpm离心5min,弃上清,保留DNA沉淀,置于真空干燥器中干燥15min。
  12. 加适量TE缓冲液溶解,4℃保存备用。

测序知识

一代测序【Sanger测序,又称为SBS法(sequence by synthesis,边合成边测序)、末端终止法】

原理:
由于双脱氧核苷酸(ddNTP)的3’位置脱氧,其在DNA的合成过程中不能形成磷酸二酯键,因此可以用来中断DNA合成反应。
在4个DNA合成反应体系中分别加入一定比例带有放射性同位素标记的ddNTP(ddATP、ddCTP、ddGTP和ddTTP),通过凝胶电泳和放射自显影,根据电泳带的位置确定待测分子的DNA序列。

二代测序【NGS ,循环阵列合成测序法】

二代测序以Illumina平台为代表,其在Sanger基础上加上了桥式PCR,克服了Sanger低通量的缺点。Illumina市场规模占到75%以上,主打Hiseq。
Illumina循环SBS法(cycle SBS),即SBRT(Sequencing By Reversible Termination,可逆终止),概括来讲就是基于可逆终止的、荧光标记dNTP来做边合成边测序的工作。其核心技术是DNA合成的可逆性末端循环,即3'-OH可逆性的修饰和去修饰。

1. Flowcell(流动池)
一个flowcell含有8条lane,lane的内表面做了专门的化学修饰(主要是把2种DNA引物“种”在玻璃表面,这两种DNA引物序列和接下来需要测序的DNA文库两端的接头序列是互补的,而且这两种DNA引物是通过共价键连到flowcell上的)

2. DNA Library(DNA文库)
所谓的DNA文库,实际上是许多个DNA片段,在两头接上了特定的DNA接头序列,形成的DNA混合物。

  • 特点:
    DNA文库有2个特点:①中间这一段插入的DNA,其序列是多种多样的;②它两头的接头序列是已知的,而且是人工特地加上去的。
  • DNA文库的制作
  1. 首先把基因组DNA用超声波打断
  2. 用酶补平两头的末端
  3. 再用Klenow酶在3‘端加上一个A碱基(因为接头的3‘端有一个突出的T)
  4. 然后再用连接酶把特定的接头连上去。连好了接头的DNA混合物,我们将其称为“DNA文库”。

3. 桥式PCR
这一步实际上就是把DNA文库“种”到芯片上然后进行扩增的过程。

  1. 首先把DNA文库加入到芯片上。因为文库两端的DNA序列和芯片上的引物序列是互补的,所以就会产生互补杂交。
  2. 形成互补杂交后,加入dNTP和聚合酶,聚合酶就会从引物开始,沿着模板链合成出一条新的DNA链。
  3. 加入NaOH溶液,DNA在碱性环境下解链。最初的那条链由于不是和芯片共价连接的所以会被冲走,而新合成的那条链则能留下。
  4. 然后再在液流池中加入中性液体,把碱性溶液中和掉,使环境变为中性。此时,DNA链的另外一端就会和玻璃板上的第二种引物发生互补杂交。
  5. 接下来,加入dNTP和聚合酶,聚合酶就沿着第二种引物合成出一条新的链来。
  6. 然后再次加碱,使DNA解链。再加中和液,再加dNTP和聚合酶,连续重复,DNA的量就会呈指数增长。
  7. 接下来要把合成的双链变成可以测序的单链:先把其中一个引物上的一个特定基团切断,然后再用碱溶液洗芯片,从而把被切断了根的DNA链被冲走。
  8. 再加入中性溶液,并在其中加入测序引物,开始测序。

4. 测序
在测序过程中加入的最主要的是两种东西:①带有荧光标记的dNTP,其3’末端要被叠氮基团堵住,所以一个循环只能延长一个碱基,然后就会停止;②聚合酶。
合成完之后,冲掉多余的dNTP和酶,然后放到显微镜下,进行光扫描。通过荧光素的不同颜色,根据红黄蓝绿颜色倒推新合成的碱基是哪种碱基,然后推出模板上的碱基是什么碱基。
循环完成之后,加入化学试剂将叠氮钠基团和旁边标记的荧光基团切掉,使3‘端的羟基暴露出来,接下来再加入新的dNTP和新的酶,再延长一个碱基,如此循环重复。

5. 读取Index(Barcode)
每一个样本有一个特定的接头,每种接头里面有一段特定的序列,即Index(也叫Barcode),它标记了样本的来源。
读取Index序列的步骤:

  1. 用碱把测完“read 1”的序列解链掉,再加入中性液,再加入“read 2”的测序引物。这个read 2测序引物结合的位点,正好就在index的旁边。
  2. 接下来进行第二轮测序,一般来说读取6~8个碱基。读取之后,我们就可以知道这段DNA来自于哪个样本。

6. 双端测序
正向测一遍,负向再测一遍,使测序的有效长度加了一倍。

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