生信分析中最常见的数据格式应该就是fastq了。我们最初拿到的数据也是fastq格式。通常情况下，原始下机数据经过拆分之后获得的数据中会包含有低质量、N(未知碱基)、接头序列等。对raw data质控的软件有很多，比如fqtools可以用来去除低质量及含N的reads，cutadapt是使用最广的去除adapter的软件。上述两个软件分开实现两个功能，导致需要对同一个fastq读取两次，增加了处理时间。Fastp是一款快速全功能的FASTQ文件自动化质控过滤预处理软件，可以一步实现对rawdata的全部过滤要求。Trimmomatic 也是一款用于去除Illumina平台的FASTQ序列中Adapter，根据碱基质量值修正FASTQ序列文件的软件。同时支持单末端(SE)和双末端(PE)测序数据。
安装
可以直接在官网下载，其软件为一个jar包。或者使用conda安装
conda install -c trimmomatic
参数：
PE/SE: 用于指定输入的数据为单端测序还是双端测序
-threads: 用于指定线程数
-phred33: 碱基质量的格式，目前比较常用的为phred33
下面部分为对fastq的修整参数设置：
ILLUMINACLIP: 用于指明接头序列的过滤标准，格式为ILLUMINACLIP:TruSeq3-PE.fa:2:30:10，TruSeq3-PE.fa文件中存放的是adapter序列，可以在软件安装目录下的adapter目录中找到。2表示比对接头时容许的最大错配数，30表示匹配度超过30%时在相应位置切除，10表示这条序列中的某个部分和adapter匹配度超过10%就去除。
SLIDINGWINDOW: 通过滑窗方式进行剪切，当窗口中的平均质量值低于某一阈值时进行切割，例如SLIDINGWINDOW:4:15表示从5‘端开始当window中的平均碱基质量值低于15时从该处进行切除。
LEADING：切除首端小于某一质量值的碱基。如LEADING:3表示切除首端质量值低于3的碱基
TRAILING：切除尾端低于某一质量值的碱基。如TRAILING:3表示切除尾端质量值低于3的碱基
CROP：保留reads至指定长度，从末尾开始切除，例如CROP:16，表示将reads切为16个碱基长度。
HEADCROP：从reads首端开始切除至指定长度，保留尾端碱基
MINLEN：切除之后的长度小于指定长度则舍弃整条reads
软件参数的顺序会影响最后切除之后的效果，例如如果参数为MINLEN:100 CROP:50，那么将会产生50bp长度的reads文件，如果参数为CROP:50 MINLEN:100那么将会把所有的reads都过滤掉。
使用示例
$ trimmomatic SE -phred33 input.fq.gz output.fq.gz ILLUMINACLIP:TruSeq3-SE:2:30:10 LEADING:3 TRAILING:3 SLIDINGWINDOW:4:15 MINLEN:36 #单端
$ trimmomatic PE -phred33 input_forward.fq.gz input_reverse.fq.gz output_forward_paired.fq.gz output_forward_unpaired.fq.gz output_reverse_paired.fq.gz output_reverse_unpaired.fq.gz ILLUMINACLIP:TruSeq3-PE.fa:2:30:10 LEADING:3 TRAILING:3 SLIDINGWINDOW:4:15 MINLEN:36 #双端
Trimmomatic 也可以自己制作包含接头和引物序列的 fasta 文件，格式可以参考软件自带的 adapters 文件夹中的格式。
adapters 文件夹中包含 illumina 测序 TruSeq2，TruSeq3 针对 SE 和 PE 的通用接头和引物序列。
