干细胞诱导-迪医明生物

间充质干细胞属于成体干细胞,在体外不同条件下诱导分化为骨、软骨及其他结缔组织,因其来源广泛,分离无创伤,较低的免疫原性、生长周期短等特点,是组织工程种子细胞的重要来源。干细胞的诱导分化一方面是干细胞鉴定的主要方法,另一方面也是干细胞功能学研究的主要途径。采用体外条件培养基诱导培养下,人间充质干细胞应能够分化为成脂肪、骨、软骨细胞。成脂分化经油红O染色法鉴定,成骨分化经茜素红染色法鉴定,成软骨分化经阿尔辛蓝染色法鉴定。

迪医明生物不仅可以提供不同来源间充质干细胞、iPS细胞,配套培养含血清和无血清培养体系以及诱导成脂、成骨、成软骨完全培养基、三系分化染色鉴定试剂盒,特别推荐您选择间充质干细胞技术服务项目——成脂、成骨、成软骨诱导技术指导和诱导实验外包服务。

迪医明生物干细胞系列产品检测结果表明,细胞无细菌、真菌、霉菌、支原体和病毒污染,表达多种间充质干细胞特异性标记,具有良好的增殖和分化潜能,可分化为成骨细胞、脂肪细胞、软骨细胞等。

产品性能

1.细胞形态

2. 细胞表型

间充质干细胞P20代细胞表型

流式细胞仪鉴定细胞表型

3.细胞诱导分化

3.1 成脂、成骨、成软骨诱导分化操作步骤

所需材料

0.05%Trypsin-0.02%EDTA(货号:CD05-001C)

Phosphate-BufferedSaline (1×PBS) (货号:BS01-001C)

间充质干细胞完全培养基(货号:CM01-001A)

间充质干细胞成脂诱导分化完全培养基(货号:DM01-001B)

间充质干细胞成骨诱导分化完全培养基(货号:DM02-001B)

间充质干细胞成软骨诱导分化完全培养基(货号:DM03-001B)

成脂诱导分化步骤

注意:本操作规程以六孔板为例

1. 将间充质干细胞置于37℃,5% CO2的培养箱中培养。

2. 当细胞生长到达对数期时,用0.05%Trypsin-0.02%EDTA进行消化。

3. 将消化下来的间质干细胞按照2×104 cells/cm2的细胞密度接种在六孔板中,每孔加入2 mL完全培养基。

4. 将细胞置于37℃,5% CO2的培养箱中进行培养。

5. 每隔三天换液,直到细胞融合度达到100%或者过融合。

6. 小心地将间质干细胞完全培养基吸走,向六孔板中加入2 mL间充质干细胞成脂诱导分化培养基 A 液。

7. 诱导3天后,吸走六孔板中的A液,加入2 mL间充质干细胞成脂诱导分化培养基B液。

8. 24h后,吸走B液,换回A液进行诱导。

9. A液和B液交替作用3-5次后(12-20天),继续用 B 液维持培养4-7天直到脂滴变得足够大、圆。B 液维持培养期间,每隔2-3天需要换用新鲜的B液。

成脂(油红O染色) 成骨(茜素红染色)

成骨诱导分化步骤

注意:本操作规程以六孔板为例

1. 将间充质干细胞置于37℃,5% CO2的培养箱中培养。

2. 当细胞融合度达到80-90%时,用0.05%Trypsin进行消化。

3. 将消化下来的间充质干细胞按照2×104 cells/cm2 的细胞密度接种在事先包被0.1%明胶的六孔板中,每孔加入2 mL完全培养基。。

4. 将细胞置于37℃,5% CO2的培养箱中进行培养。

5. 当细胞融合度达到60%-70%时,小心的将孔内完全培养基吸走,向六孔板中加入2 mL间充质干细胞成骨诱导分化完全培养基。

6. 每隔3天换用新鲜的间充质干细胞成骨诱导分化完全培养基(使用前需预热至37℃)

7. 诱导2-4周后,视细胞的形态变化及生长情况,用茜素红进行染色。

注意:为防止成骨细胞脱落,建议成骨过程中出现大量钙结节之后,换液形式变为每两天一次半量换液。

成软骨诱导分化步骤

1. 进行成软骨诱导实验之前,需要对常规消化后的细胞进行计数。

2. 将3-4×105个细胞转移到15 mL离心管中,250 g离心4 min。

3. 吸去上清,加入0.5 mL预混液,重悬上一步离心所得沉淀,以清洗间充质干细胞,室温下150 g离心5 min。

4. 重复步骤3,再次清洗细胞。

5. 将上一步所得沉淀用0.5 mL间充质干细胞成软骨诱导完全培养基重悬。

6. 室温下150 g离心5 min。

7.拧松离心管盖以便于气体交换,将其放置于37℃,5% CO2的培养箱中培养。

注意:

① 此步骤不要吸掉上清和重悬细胞。

② 24 小时之内不要摇动离心管。

8. 当细胞团出现聚拢现象时(一般为24 h或48 h后,实际视细胞生长情况而定)轻弹离心管底部使软骨球脱离管底悬浮在液体中。

9. 自接种开始计算,每隔2-3 d 给细胞换用新鲜的成软骨诱导完全培养基,每管约0.5 mL成软骨诱导分化完全培养基。

注意:小心操作,不要吸出软骨球。

10.换液之后,轻弹离心管底部使软骨球脱离管底悬浮在液体中。稍加拧松离心管盖放入37℃,5% CO2的培养箱中继续诱导培养。

11.一般持续诱导21-28天后,可对软骨球进行福尔马林固定和石蜡包埋切片,最后进行阿利辛蓝染色。

成软骨(阿利新蓝染色)

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