单细胞PCA降维的时候，肘部图(ElbowPlot)上显示排名较高的 PC 比排名较低的 PC 解释了更多的数据差异（具有更高的标准差）。PC的解释方差变化趋势属于非线性曲线，肘部图中前几个PC 方差曲线急剧下降，然后变慢并变得平坦。一般假设PC的解释方差曲线的骤降第一阶段代表与细胞群之间的生物学差异相关的“真实”信号，而第二阶段主要代表技术变异或单个细胞的随机噪音。
关于量化挑选构建聚类图的主成分数量面临的问题：
- 很难根据肘部图精确定义曲线的转折点，因为它通常不是完美的弯头。
- 排名较高的主成分确实比排名较低的主成分解释了更多的变异，但更多解释的变异并不一定意味着更高的生物学信息含量。有时会有有趣但微弱的信号隐藏在噪音中，作为较低等级主成分的一部分。
Seurat 官方提供了一个通过PCA随机检验的方式选择有效主成分的方法
JackStraw，它也可以帮助确定要考虑多少 PC 进行下游分析。不过该方法因为它依赖于数据的排列检验，它的计算过程非常缓慢。它所做的是估计每个主成分的统计显着性(是否显著有效)，但同样，“显著” PC 并不意味着它具有信息量。当细胞数量增加时，越来越多的 PC 在统计上变得“显着”，即使它们解释的变异并不大。【scRNAseq_analysis_vignette/Tutorial.md at master · quadbiolab/scRNAseq_analysis_vignette · GitHub】
cur_seu <- JackStraw(cur_seu)
cur_seu[["pca"]]@jackstraw$overall.p.values ### top20 PC的有效性P值
cur_seu <- ScoreJackStraw(cur_seu,dims = 1:20)
JackStrawPlot(cur_seu,dims = 1:20) ### 可视化PC的p值比较随机水平的p值分布
相比起Seurat 随机检验识别拐点方法，另一种高效的方式可以从PCA的定义和肘部图的特点出发来设计识别拐点：
- 通过筛选贡献 小于5% 方差和累计贡献 90% 方差的PC截断点作为曲线拐点；
- 连续 PC 之间的差异方差贡献百分比变化小于 0.1% 的点作为曲线拐点；
以下是该方法的实现
1、加载数据
pacman::p_load(Seurat,SeuratData,ggplot2,dplyr)
data("pbmc3k")
### PP data
cur_seu <- pbmc3k %>% SCTransform() %>% RunPCA()
2、量化拐点识别
#### PCA拐点定量识别
pct <- cur_seu[["pca"]]@stdev / sum(cur_seu[["pca"]]@stdev) * 100 ; cumu <- cumsum(pct)
pc.use <- min(which(cumu > 90 & pct < 5)[1],sort(which((pct[1:length(pct) - 1] - pct[2:length(pct)]) > 0.1),decreasing = T)[1] + 1)
3、可视化量化识别的拐点
ElbowPlot(cur_seu)$data %>% ggplot() +
geom_point(aes(x = dims,y = stdev)) +
geom_vline(xintercept = pc.use, color = "darkred") +
theme_bw() + labs(title = "Elbow plot: quantitative approach")
Reference
Elbow plot: quantitative approach | Introduction to Single-cell RNA-seq - ARCHIVED (hbctraining.github.io)
【scRNAseq_analysis_vignette/Tutorial.md at master · quadbiolab/scRNAseq_analysis_vignette · GitHub】
