DAP-SEQ技术简介
DAP-SEQ是基于DNA亲和纯化，通过体外表达转录因子鉴定TFBS的技术，具有不受抗体和物种限制，且高通量的优势，自该技术问世以来，已被广泛应用于转录调控和表观组学的研究。
那么关于DAP-SEQ都有哪些问题需要关注呢？
1. DAP-seq原理、技术流程，能解决什么样的问题?
原理：体外表达的蛋白和DNA进行亲和纯化，将与蛋白结合的DNA洗脱后进行高通量测序。
技术流程：将编码转录因子的CDS序列构建到含有亲和标签的载体中，构建蛋白表达载体，进行体外蛋白表达，形成转录因子和亲和标签的融合蛋白；提取样品的基因组DNA，构建DNA文库，然后将体外表达的带有亲和标签的转录因子和DNA文库进行结合，随后把结合的DNA洗脱后上机测序。
能帮助您快速找到转录因子的结合位点，寻找转录因子调控的靶基因。
蓝景科信DAP-seq流程：
2. 需要提供什么材料？
需要您提供：
（1）组织材料或者是提取好的基因组DNA；
（2）含有转录因子CDS序列的质粒。
3. 分析结果包括哪些内容？
蓝景科信DAP-seq的生信分析包括以下内容：
1.对原始数据进行去除接头、污染序列及低质量 reads 的处理
2.数据产出统计
3.参考序列比对分析
4.测序reads富集区域扫描（peak calling）
5.Peak长度分布统计
6.Peak在基因功能元件上的分布统计
7.Peak序列模式发掘（motif search）
8.已知motif注释
9.Peak相关基因鉴定
10.Peak相关基因的GO和KEGG富集分析
11.测序数据的差异分析（>=2个样本）
12.测序数据的可视化分析
4.实验的成功率怎么样？
不同转录因子家族的成功率不同，请参考不同转录因子家族的DAP-seq成功率：
5. 为什么有些基因家族的成功率很低？
有些转录因子需要和其他蛋白形成复合体才能与DNA结合，这些蛋白的风险比较高。
6. 一些特殊的样品能不能做，有没有风险？
有两种情况的样品是不能做DAP-seq 实验的，一种情况是没有参考基因组，另一种情况是转录因子不能在体外表达出来，除此之外，我们会做可行性分析报告供您参考。
7. 包含重复吗？
包含两个技术重复。
8. 做这个蛋白表达的时候，使用的什么表达系统？
优先使用真核表达系统进行蛋白表达，如果真核表达系统不能表达成功的话可以沟通换用原核表达系统。
9. 植物组织样本取样的时期部位有什么要求？
植物组织样本取样的时期和部位是您根据自己的研究需求确定，不同组织和时期DNA的修饰不同，可能会影响蛋白和DNA的结合。
10. DAP-seq跟ChIP-seq有何区别,DAP-seq的优势表现在哪里?
DAP-seq和ChIP-seq的区别：
AP-seq的优势：不需要针对每个转录因子制备特异性抗体，快速、高通量、节约时间成本。
11. DAP-seq用的input是什么，为什么选这个作为对照呢？
Input对照是用的亲和纯化前的文库，目的是降低背景噪音，我们用的Input和2016年发表在Cell（DAP Seq-Cistrome and Epicistrome Features Shape the Regulatory DNA Landscape）上的论文是一致的。
12. 为什么实验中表达的有些蛋白比理论值偏大？
很多蛋白表达出来比理论值大一些，因为有一些翻译后修饰，很多情况都是这样的，原核表达也有这类情况，比如拟南芥SnRK蛋白激酶，预测40 kd，通过原核表达，实际分子量是60 kd。
