ChIP-seq等揭示FoxO1增加SMC4转录和METTL14介导m6A修饰以促进卵巢癌发展 | 肿瘤研究

卵巢癌(Ovarian cancer,OC)是影响女性生殖系统的三种常见恶性肿瘤之一。转录因子Forkhead box蛋白O1(FoxO1),又称forkhead横纹肌肉瘤(rhabdomyosarcoma)转录因子,属于Forkhead box O(FoxO)转录因子家族,处于肿瘤分子调控网络的中心。大量研究表明,FoxO1失衡与肿瘤发展、侵袭和转移的病理过程密切相关。然而,关于FoxO1在OC中的作用没有统一的结论。

2024年2月25日,医药生物技术国家重点实验室(南京大学)窦环博士团队以“FoxO1 promotes ovarian cancer by increasing transcription and METTL14-mediated m6A modification of SMC4”为题在《Cancer Science》杂志发表研究论文,讨论了FoxO1在OC中的作用和分子机制,表明了FoxO1驱动的4号染色体结构维持(structural maintenance of chromosome 4,SMC4)表达对OC发生至关重要,本研究可能为OC患者的早期诊断和靶向治疗提供重要启示。

标题:FoxO1 promotes ovarian cancer by increasing transcription and METTL14-mediated m6A modification of SMC4(FoxO1增加SMC4转录和METTL14介导m6A修饰以促进卵巢癌发展)

时间:2024-2-25

期刊:Cancer Science

影响因子:IF 5.7

技术平台:ChIP-seq等


研究摘要

转录因子FoxO1与卵巢癌(OC)发生发展密切相关,但其作用和分子机制尚不清楚。本研究分析结果解释了FoxO1在OC患者的临床样本中高表达,且与预后不良显著相关。FoxO1敲低在体外和体内抑制OC细胞增殖。ChIP-seq结合GEPIA2和Kaplan-Meier数据库分析表明,4号染色体的结构维持(SMC4)是FoxO1的下游靶标,FoxO1通过与其-1400/-1390 bp启动子结合来促进SMC4转录。SMC4高表达显著阻断了FoxO1敲低的肿瘤抑制作用。此外,FoxO1通过转录激活甲基转移酶样14(METTL14)并增加其编码序列区域上的SMC4 m6A甲基化来增加SMC4 mRNA丰度。癌症基因组图谱(TCGA)数据集分析证实了OC中FoxO1、SMC4和METTL14表达之间存在显著正相关。总之,这项研究揭示了FoxO1调控SMC4的分子机制,并在OC发生过程中FoxO1/METTL14/SMC4的表达之间建立了临床联系,从而提供了潜在的诊断靶点和治疗策略。

研究结果

(1)卵巢癌(OC)中FoxO1过表达与预后不良相关。

图1:FoxO1在OC组织中上调,FoxO1的高表达与预后不良有关。 (A)FoxO1基因在GSE18520的OC和正常卵巢组织中的表达水平。 (B)IHC检测到34例OC组织和邻近正常对照组织中FoxO1表达的代表性图像。 (C-D)  FoxO1染色强度(C)和定量分析(D)的代表性图像。 (E)使用Kaplan–Meier数据库分析了TCGA和GEO数据集中OC患者的OS和PFS。


表1:OC患者FOXO1蛋白水平与临床病理特征的关系。

(2)FoxO1在体外促进OC细胞增殖、迁移和侵袭

图2:FoxO1过表达促进体外OC细胞的增殖、迁移和侵袭并抑制其凋亡。 (A-B)  用FoxO1过表达质粒或空载体转染的OC细胞系中FoxO1 mRNA和蛋白质表达的比较。 (C)    使用CCK-8法分析细胞活力。 (D)    通过菌落形成实验确定的菌落的代表性图像。 (E–H)  通过流式细胞术检测EdU(E)、细胞周期(F)和凋亡(H)检测到的细胞增殖;(G)western blot检测G1/S期标记蛋白。 (I)     划痕愈合实验检测细胞迁移。比例尺=400μm。 (J-K)   通过transwell检测细胞迁移(J)和侵袭(K)能力。比例尺=200μm。
图3:FoxO1沉默在体外抑制OC细胞的增殖、迁移和侵袭并促进其凋亡。 (A-B)  用siFoxO1或siNC转染的OC细胞系中FoxO1 mRNA和蛋白质表达的比较。 (C)    使用CCK-8测定法分析细胞活力。 (D)    通过菌落形成实验确定的菌落的代表性图像。 (E–H)  通过流式细胞术测定EdU(E)、细胞周期(F)和凋亡(H)检测到的细胞增殖;(G)western blot检测G1/S期标记蛋白。 (I)     划痕愈合实验检测细胞迁移。比例尺=400μm。 (J-K)   通过transwell检测细胞迁移(J)和侵袭(K)能力。比例尺=200μm。

(3)敲低FoxO1抑制体内OC肿瘤发生

图4:FoxO1的敲低抑制了C57BL/6小鼠中ID8衍生的原位异种移植物的生长。将稳定转染shNC或靶向FoxO1的shRNA的ID8细胞皮下注射到C57BL/6小鼠的背侧(n=6)。 (A-B)  通过RT-qPCR和western blot验证慢病毒产生稳定FoxO1敲低细胞系。 (C-E)  (C)肿瘤结节、(D)肿瘤重量和(E)小鼠异种移植物肿瘤体积的生长曲线。 (F)    小动物的活体成像检测异种移植肿瘤的荧光强度。 (G)    IHC检测shNC和shFoxO1肿瘤组织中Ki-67的表达。

4、SMC4受FoxO1转录调控

图5:FoxO1直接激活OC中的SMC4转录。 (A)   OC中FoxO1下游靶标的筛选策略图。 (B)   使用GEPIA2数据库分析了OC和正常卵巢组织样品之间DEG的火山图。 (C)   DEG的GO富集分析(列出了前20位)。 (D)    ChIP-seq分析ID8细胞中FoxO1结合序列在DNA长度上的分布。 (E)    FoxO1结合启动子区域中基因的维恩图以及细胞迁移、增殖和周期的DEG。 (F)    RT-qPCR检测FoxO1的36个潜在结合靶标的表达,并稳定敲低FoxO1及其对照细胞。 (G-H)  在FoxO1的高表达或敲低后检测到SMC4的mRNA和蛋白质水平。 (I)     FoxO1与SMC4启动子序列结合的IGV图。 (J)     JASPAR数据库预测了SMC4启动子区域中潜在的FoxO1结合位点和motif。 (K)     ChIP-qPCR验证SMC4启动子处FoxO1的富集水平。 (L)     SMC4启动子荧光素酶报告基因示意图。 (M)    转染FoxO1过表达或对照质粒后,检测到SMC4-WT、SMC4-MUT或SMC4-TRU结合位点的荧光素酶活性。 (N)    转染FoxO1过表达或稳定敲低FoxO1及其对照ID8细胞的对照质粒后,检测到具有WT结合位点的荧光素酶活性。

(5)SMC4介导FoxO1加重体内OC恶性表型


图6:SMC4促进ID8细胞的增殖、迁移和侵袭,并抑制其凋亡,是FoxO1促进卵巢癌(OC)过程中的关键分子。 (A-B)   在GEO数据集中比较OC组织与正常上皮组织中SMC4的表达水平。 (C-D)   使用Kaplan–Meier数据库分析TCGA和GSE9891数据集中OC患者的总生存期(OS)和无进展生存期(PFS)。 (E-F)   检测转染SMC4高表达质粒或siSMC4后的SMC4 mRNA和蛋白水平。 (G)    使用CCK-8实验分析细胞活力。 (H)    通过集落形成实验确定的代表性图像。 (I–L)   通过流式细胞仪检测EdU标记的细胞增殖(I)、细胞周期(J)和凋亡(L); (K)    通过western blot检测G1/S期标记蛋白。 (M)    使用划痕愈合实验检测细胞迁移。比例尺= 400μm。 (N)    通过Transwell实验检测细胞迁移和侵袭能力。比例尺= 200μm。 (O)    通过western blot检测TGF-β/Smad和JAK2/STAT3通路分子的蛋白表达变化。将稳定转染了shNC或针对FoxO1的shRNA的ID8细胞皮下注射到C57BL/6小鼠的背部侧翼(n = 6),并在肿瘤内注射高表达SMC4的慢病毒或对照病毒。 (P)    在肿瘤中检测SMC4的蛋白表达水平。 (Q-S)  小鼠异种移植物的肿瘤结节(Q)、肿瘤重量(R)以及肿瘤体积(S)生长曲线。

(6) FoxO1通过METTL14介导的m6A修饰促进SMC4 mRNA的稳定性

图 7:FoxO1通过调调控METTL14介导的m6A修饰来促进SMC4表达。 (A)    在用放线菌素D(5微克/毫升)处理0、3或6小时后,使用RT-qPCR分析FoxO1低表达对ID8细胞中SMC4 mRNA半衰期的影响。 (B)    在FoxO1高表达后,检测m6A修饰关键调控基因的mRNA水平。 (C)    在FoxO1高表达后,检测m6A修饰关键调控基因的蛋白水平。 (D)    使用Kaplan–Meier数据库分析GSE30161数据集中OC患者的总生存期(OS)和无进展生存期(PFS)。 (E-F)   在转染高表达METTL14质粒或siMETTL14后,检测METTL14和SMC4的mRNA和蛋白水平变化。 (G)    使用Western blot检测在敲低FoxO1后高表达METTL14对METTL14和SMC4蛋白水平的影响。 (H)    使用METTL14-RIP-qPCR检测FoxO1敲低后SMC4 mRNA的富集情况。 (I)     SRAMP数据库中SMC4 mRNA的预测结果显示m6A修饰的潜在位点。红色箭头指向高置信度位点。 (J)     使用MeRIP-qPCR检测在METTL14低表达后SMC4 mRNA预测结合位点的富集情况。 (K)    使用RT-qPCR分析METTL14高或低表达对SMC4 mRNA半衰期的影响。 (L)     在ID8细胞中转染含有RNA甲基化编辑器和gRNA或非靶向gRNA(NT-gRNA)的慢病毒后,通过RT-qPCR检测SMC4 mRNA的半衰期。 (M)    在ID8细胞中转染含有RNA甲基化编辑器和gRNA或NT-gRNA的慢病毒后,检测SMC4 mRNA和蛋白的表达。 (N)    在ID8中敲低FoxO1后,使用MeRIP-qPCR检测SMC4 mRNA预测结合位点的富集情况。 (O)    使用ChIP-qPCR鉴定FoxO1在METTL14启动子的富集水平。 (P)    在转染FoxO1过表达或对照质粒后,检测METTL14-WT、METTL14-MUT结合位点的荧光素酶活性。

(7)OC中FoxO1、SMC4和METTL14的表达呈正相关

图8:在临床样本和小鼠模型中,FoxO1、SMC4和METTL14在卵巢癌(OC)中的相关性分析。 (A)    散点图显示了来自TCGA的376名OC患者OC组织中FoxO1、SMC4和METTL14 mRNA的相关性。 (B)    使用斯皮尔曼相关性分析检测了12只小鼠异种移植物中FoxO1、SMC4和METTL14 mRNA水平之间的相关性。 (C)    工作模型展示了通过转录激活和增加METTL14介导的m6A修饰来调控SMC4,从而促进OC的发展。

研究小结:

本研究揭示了FoxO1在卵巢癌(OC)中的致癌作用,以及FoxO1在SMC4的转录激活和METTL4介导的m6A修饰机制。FoxO1可以直接与SMC4启动子结合,以促进SMC4的翻译,此外,FoxO1还可以直接与METTL14启动子结合,并通过m6A METTL14依赖性方式促进SMC4的稳定性,从而促进OC细胞的增殖、迁移和侵袭(图8C)。这些发现表明,FoxO1/METTL14/SMC4轴是诊断和治疗OC的一个有前景的因素。

参考文献:

TanL, Wang S, Huang S, Tie Y, Sai N, Mao Y, Zhao S, Hou Y, Dou H. FoxO1 promotesovarian cancer by increasing transcription and METTL14-mediated m6 Amodification of SMC4. Cancer Sci. 2024 Feb 25. doi: 10.1111/cas.16120. PubMedPMID: 38403332.

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