FastDNA SPIN Kit for Soil-实验步骤详细解说
一、样品和试剂:
1.已经准备好的新鲜土壤样品
2.试剂盒中的SEWS-M按要求加入100mL乙醇后使用
3. Matrix溶液需要在65-75℃下加热,混匀。
二、使用的仪器和材料:
超净台、离心机等等。全程在超净台中操作,实验服和手套配套齐全。
友情提醒:关于样品的处理和准备此处不作说明。
以下是此实验材料所附的说明书中protocol部分的翻译,并且标注了一些实验的注意事项。
如果有其他需求可以留言~❀
5. Protocol 流程(中英双语)
1.Add up to 500 mg of soil sample to aLysing Matrix E tube. Note: See section 3.2 for important guidelines.
添加500毫克的土壤样品到一个Lysing Matrix E tube。注:重要指南见第3.2节。
注意:1、管子很小,口窄,下一步需要加入试剂,所以不要让土样堵塞管口以免液体不易进入。
2、多个样品需要写标签,油性笔写的标签容易被过程中沾染的有机溶剂溶解,记得及时补标签,以免搞混。
2.Add 978μL SodiumPhosphate Buffer to sample in Lysing Matrix E tube. Vortex 10-15 seconds.
在上述的Lysing Matrix E tube中,向样品中加入978 μL Sodium Phosphate Buffer(磷酸钠缓冲溶液)。涡旋10-15秒。
注意:用移液枪操作,枪头不要碰到土样!若碰到土样,记得换枪头、补土样。
3.Add 122μL MT Buffer.Shake vigorously to mix, then vortex 10-15 seconds.
添加122μL MT Buffer。大力摇匀,然后涡旋10-15秒。
4.Homogenize in the FastPrep Instrumentfor 40 seconds at a speed setting of 6.0.
在FastPrep仪器中均质40秒,速度设置为6.0。
注意:没有FastPrep设备的话,可以用涡旋代替,但应该大幅延长涡旋时间,比如每个样品涡旋5mins-10min,以保证破碎效果更好。
5. Centrifuge at 14,000 x g for 5-10minutes. NOTE: Extending centrifugation to 15 minutes can enhance eliminationof excessive debris from large samples, or from cells with complex cell walls.
14000 x g离心5-10分钟。注意:将离心时间延长至15分钟可以增强对大样本或复杂细胞壁细胞中过量碎片的清除。
注:1、注意使用离心机之前要配平,配平之后要再次确认,对角线样品的质量应该保持小数点后第二位相同,比如1.223g&1.228g。不同的离心机要求不同,以自己的设备为准。
2、在等待离心的时间里可以写下一步所要用到的microcentrifuge tube的标签。
6. Transfer supernatant to a clean 2.0 mL microcentrifuge tube. Add 250 μL PPS ( ProteinPrecipitation Solution ) and mix by shaking the tube by hand 10 times , thenincubate at room temperature for 10 minutes . Do not vortex!
将上清液转移到干净的2.0 ml microcentrifuge tube中。加入250 μL PPS溶液,用手摇管10次,然后室温孵育10分钟。不要涡旋!
注意:用合适的移液枪或者注射器转移上清液,记得换枪头~下一步需要继续使用上清液,所以在不过分扰动底层沉淀物的前提下,尽可能多地转移全部上清液。
7. Centrifuge at 14,000 x g for 5 minutesto pellet precipitate. Transfer supernatant (600-800μL) to a clean 2.0 mlmicrocentrifuge tube. Add an equal amount of Binding Matrix to themicrocentrifuge tube. Shake gently by hand to mix, then place on a rocker orinvert by hand for 3-5 minutes to allow binding of DNA to matrix.
14000转速下离心5分钟,使颗粒沉淀。将上清液(600-800μL)转移到干净的2.0 ml microcentrifuge tube中。在microcentrifuge tube中加入等量的Binding Matrix(意思是加入和microcentrifuge tube中的上清液相同的量)。用手轻轻摇动混合,然后放在摇杆上或用手倒转3-5分钟,让DNA与基质结合。
注意:Matrix溶液需要在65-75℃下加热,摇匀之后使用。Matrix:基质。
8.Mix the solution by pipetting upand down several times.Transfer 800μL of solution to a SPINT М Filtertube.Centrifuge at 14,000x g for 5minuets. Empty catch tube. Repeatmixing, transferring and centrifuging for the remaining solution to the sameSPINT М filter tube. discard the flow-through.
上下吸液几次,混合溶液(意思是用移液枪吸、放几次液体,混合溶液)。将800μL溶液转移到SPINT М Filter tube中。14000 x g离心5分钟。清空catch tube(将离心出来的液体清空)。重复混合,转移和离心剩余溶液到同一SPINT М filter tube。仍然丢弃catch tube里的液体。
注意:这里的重复混合,转移和离心意思是将刚刚剩余的,没有转移完的混合液(上清液和Binding Matrix的混合液),用枪头混合、转移、离心。不要搞错操作对象。
9. Add 500μL prepared SEWS-M to the SPINT МFilter tube. Shake gently by hand or flick the tube to mix.
将500μL准备好的SEWS-M(要提前加乙醇)添加到SPINT М Filter tube中。用手轻轻摇动或轻弹管子以混合。
注意:不想用手指可以用笔杆弹,很快乐呢。
10.Centrifuge at 14,000xg for 5 minute.Empty the catch tube and centrifuge again for 5 minutes to remove the residualethanol.
14000 x g离心5分钟。清空catch tube,再次离心5分钟,以除去残余的乙醇。
注意:等待时可以准备下面所需的55℃水浴。
11.Transfer the SPINT М Filter to a clean2.0 mL catch tube. Air dry the SPINT М Filter fo 5 minutes at room temperature.
转移SPINT МFilter到一个干净的2.0毫升catch tube。SPINT М Filter在室温下风干5分钟。
注意:这里需要换一个新的catch tube,将滤芯部分放到新的catch tube中。在超净台里,开盖,室温风干五分钟。等待时准备下一步所需的55℃水浴,节省时间。
12.Add 100μL DES to the SPINT М Filter tubeand gently resuspend the pellet by finger flicking.
NOTE: Yields may be increased by incubationfor 5 minutes at 55℃in a heat block or water bath.
将100μL DES添加到SPINT М Filter tube中,用手指轻弹使剩余的固体部分重新悬浮。
提示:产量可通过在55摄氏度的热锅或水浴中孵育5分钟来提高。
注意:最好进行孵育,效果更好。
13.Centrifuge at 14,000 x g for 2 minute to elute the DNA into the catch tube.
Discard the SPIN filter. DNA is now ready for PCR and other downstream applications.
Store at -20℃ for extended periods or 4℃ until use.
14000 x g离心2分钟,将DNA洗脱到catch tube。丢弃SPIN filter部分。DNA现在可以用于PCR和其他用途 。在-20℃下长时间保存或在4℃下保存直至使用。
说明:
1.本人水平有限,本文仅供参考。文中若有错误,敬请指正。
2.此实验根据实验室条件不同,细节处或有不同。欢迎友好讨论~