BS+ChIP-seq揭示DNA甲基化调控非编码RNA(VIM-AS1)抑制肿瘤侵袭性|Exp Mol Med

肝细胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)早期复发仍然是一个具有挑战性的领域,其中涉及的机制尚未完全被理解。尽管微血管侵犯(Microvascular invasion,MVI)与HCC早期复发相关,但缺乏用于诊断和预后评估的理想生物标志物。DNA甲基化和长链非编码RNA(lncRNA)作为表观遗传调控因子,在HCC中的表达变化与疾病发病机制密切相关。因此,鉴定可以预测肝癌患者预后的DNA甲基化位点,并阐明驱动HCC侵袭性的分子机制至关重要。

近日,《Experimental & Molecular Medicine》期刊发表了题为“VIM-AS1, which is regulated by CpG methylation, cooperates with IGF2BP1 to inhibit tumor aggressiveness via EPHA3 degradation in hepatocellular carcinoma“的研究论文,该研究探讨了在肝细胞癌(HCC)中,通过CpG甲基化调控的非编码RNA VIM-AS1(vimentin antisense RNA1)(一种1.8 kb长的非编码RNA)与IGF2BP1合作,通过EPHA3降解来抑制肿瘤侵袭性。研究发现,VIM-AS1高甲基化与HCC预后不良相关,并能够通过影响EPHA3 mRNA稳定性来调控HCC侵袭性。

标题:VIM-AS1, which is regulated by CpG methylation, cooperates with IGF2BP1 to inhibit tumor aggressiveness via EPHA3 degradation in hepatocellular carcinoma(VIM-AS1 受 CpG 甲基化调控,与 IGF2BP1 协同作用,通过降解 EPHA3 抑制肝细胞癌中的肿瘤侵袭性)

期刊:Experimental & Molecular Medicine(Exp Mol Med)

影响因子:IF 9.5

技术平台:BS、ChIP-seq、MeRIP-seq分析、RNA-seq等(易基因金牌技术)


本研究首先利用CGRC和TCGA数据库中HCC患者样本的DNA甲基化数据,鉴定出HCC中的高甲基化CpG位点。数据分析结果揭示了cg02746869是VIM-AS1的关键调控位点。调控VIM-AS1表达的HCC细胞RNA-seq测序揭示了EPHA3是VIM-AS1的病理靶标,在HCC中发挥致癌作用。高甲基化导致的VIM-AS1表达抑制显著影响HCC细胞动态变化,尤其损害细胞的移动性和侵袭性。从机制上讲,VIM-AS1表达降低通过增强IGF2BP1与EPHA3 mRNA的结合来稳定EPHA3 mRNA,导致EPHA3 mRNA表达增加,并促进HCC进展。进一步体内实验证实,VIM-AS1-EPHA3轴调控HCC的肿瘤生长和肿瘤微环境。以上研究结果表明,cg02746869位点高甲基化导致的VIM-AS1下调通过m6A依赖性机制增加EPHA3 mRNA表达,从而增加HCC侵袭性。


结果图形

(1)cg02746869 甲基化状态调控VIM-AS1在 HCC 中的表达

图1:DNA甲基化分析揭示HCC患者VIM-AS1中cg02746869位点的高甲基化状态。 a. 根据CGRC和TCGA数据库的甲基化组数据,示意图显示在HCC中鉴定出的50个高甲基化位点(左图);50个高甲基化位点位于CpG islands、CpG shores、CpG shelves和open sea区域(中间图);50个高甲基化位点与转录起始位点(TSS)之间的距离分布(右图)。 b. 在多种恶性肿瘤中cg02746869位点的beta值分析。 c. 热图表示不同类型癌症中VIM-AS1表达和cg02746869甲基化模式(左图)。cg02746869位点的beta值与VIM-AS1表达水平的相关性分析(右图)。 d. 在THLE2和HUH1中cg02746869位点的甲基化和相关VIM-AS1表达。 e. 在DNMT3A实验组中使用HRM和BS-seq验证甲基化水平增加,并检测到VIM-AS1表达下调。在TET1实验组中使用HRM和BS-seq验证甲基化水平下降,并验证了VIM-AS1表达。 f. H3K27ac and H3K4me3的ChIP-seq基因组浏览器显示THLE2和HUH1中cg02746869位点活性标记富集结果。 g. 甲基化和去甲基化后cg02746869位点的ChIP-qPCR用于评估组蛋白活性和转录因子(TF)结合。Con =对照组,DNMT3A = 高甲基化cg02746869位点,TET1 = 低甲基化cg02746869位点。

(2)VIM-AS1过表达抑制癌细胞侵袭性

图2:VIM-AS1水平整体升高进而下调与细胞粘附相关的基因。 a. 使用FISH检测VIM-AS1定位的代表性图像(左图)。VIM-AS1相对强度,表示亚细胞定位的百分比(中间图)。THLE2和HUH1之间每种亚细胞定位强度比较(右图)。 b. 通过qRT-PCR(左图)和RNA-seq(右图)验证VIM-AS1过表达细胞。 c. 在VIM-AS1过表达后上调和下调基因的差异表达基因(DEG)相关性分析图(左图)。红色=前5个上调基因;蓝色=前5个下调基因。VIM-AS1下调的DEG的GO分析(右图)。 d. 与细胞粘附相关下调DEG的GSEA结果。 e. VIM-AS1过表达细胞中细胞粘附相关基因qRT-PCR。 f. 迁移和侵袭实验的代表性图像和定量分析。

 (3)VIM-AS1 调控EPHA3 mRNA稳定性

图3:VIM-AS1调节EPHA3 mRNA稳定性,与HCC预后不良相关。 a. THLE2、HUH1以及甲基化修饰样本中EPHA3 mRNA相对表达量。显示EPHA3 mRNA表达量对VIM-AS1调控的响应变化。VIM-AS1 OE = VIM-AS1过表达,VIM-AS1 KD = VIM-AS1敲低。 b. 使用放线菌素D处理HUH1细胞后EPHA3 mRNA的RNA稳定性实验。 c. VIM-AS1过表达后EPHA3蛋白的免疫印迹图。 d. EPHA3 mRNA敲低后的细胞迁移和侵袭实验。 e. 使用GEPIA分析了不同阶段VIM-AS1和EPHA3 RNA的表达量。 f. Kaplan-Meier生存曲线分析所有HCC患者以及微血管侵犯(MVI)患者EPHA3 mRNA预后生存率。

(4)EPHA3 mRNA稳定性通过 IGF2BP1 与 m6A 位点结合来确定

图4:IGF2BP1以m6A依赖性方式破坏EPHA3 mRNA稳定性。 a. 基因组浏览器快照显示GSE928399中HEK293T细胞EPHA3 MeRIP-seq的m6A修饰位点(顶部),使用RM2Target预测m6A位点(中间)以及实验靶向的3′UTR m6A位点区域(底部)。EPHA3的3′ UTR的MeRIP-qPCR结果。 b. HCC肿瘤组织(T)相对于正常组织(N)中m6A修饰因子的差异表达;FC=倍数变化。 c. RIP-qPCR实验显示HUH1细胞中与IGF2BP1结合的EPHA3和VIM-AS1 RNA。 d. IGF2BP1沉默对EPHA3 mRNA表达的影响。 e. 对包括m6A位点在内的EPHA3 3′UTR野生型(WT)和突变型(MUT)构建体的MeRIP-qPCR分析。 f. 在IGF2BP1沉默后使用WT和MUT构建体进行的荧光素酶实验。

(5)VIM-AS1 干扰 IGF2BP1 与EPHA3结合

图5:VIM-AS1通过抑制IGF2BP1与EPHA3 mRNA的互作来调节EPHA3 mRNA表达。 a-b. RIP-qPCR实验显示,在HUH1细胞中VIM-AS1过表达(a)和在THLE2细胞中VIM-AS1敲低(b)后,VIM-AS1和EPHA3 mRNA对IGF2BP1的结合亲和力。 c. 示意图显示VIM-AS1表达增加/减少对EPHA3 mRNA的影响如何通过IGF2BP1介导。 d. FISH结果显示VIM-AS1和IGF2BP1(左图)以及EPHA3 mRNA和IGF2BP1(右图)定位。条形图显示每个FISH数据集相对共定位荧光强度。白色箭头=VIM-AS1或EPHA3 mRNA与IGF2BP1共定位区域。

(6)EPHA3 mRNA在与肝细胞癌(HCC)相关的成纤维细胞中富集。

图6:VIM-AS1-EPHA3轴调控基因参与HCC侵袭性。 a. 在VIM-AS1过表达细胞和VIM-AS1与EPHA3共过表达细胞中VIM-AS1和EPHA3的相对表达量。 b. GSEA显示与细胞粘附相关的基因。红色条形=因VIM-AS1过表达而表达量减少、但在VIM-AS1和EPHA3都过表达时增加的DEGs。 c. 基因网络分析揭示,由VIM-AS1调节的EPHA3 mRNA与EPHA3 mRNA表达量一同下调/上调。 d. 与EPHA3 mRNA协同调控基因的单细胞RNA-seq图谱(GSE149614)。

(7)VIM-AS1 过表达抑制EPHA3mRNA并减少体内肿瘤发生

图7:VIM-AS1抑制肝细胞癌中肿瘤微环境的变化。 a. 每组肿瘤体积和重量变化图表。 b. 从每组切除的肿瘤图像。 c. 细胞和结构变化的HE染色切片。 d. 胶原沉积的天狼星红染色。 e. 马松三色染色及胶原沉积面积的定量。 f. α-SMA(顶部)和CD31(底部)的IF染色及定量。白色箭头= CD31阳性血管。Con=对照组,VIM-AS1 = VIM-AS1过表达,VIM-AS1/EPHA3 = VIM-AS1和EPHA3共过表达。

易小结

本研究通过BS-seq和ChIP-seq及对应的RNA-seq分析揭示了cg02746869是VIM-AS1的关键调控位点,其高甲基化与VIM-AS1的表达下调相关。VIM-AS1下调通过增强IGF2BP1与EPHA3 mRNA结合,增加EPHA3 mRNA表达,从而促进HCC进展。在HCC细胞中,VIM-AS1过表达能够降低与细胞粘附相关基因表达,并抑制HCC细胞的迁移和侵袭能力。在动物模型中,VIM-AS1过表达抑制了肿瘤生长和肿瘤微环境变化。

研究结果表明,VIM-AS1表达受CpG甲基化调控,其下调通过m6A依赖性机制增加了EPHA3 mRNA表达,从而增加HCC侵袭性。VIM-AS1和EPHA3可能作为HCC诊断和治疗的表观遗传标记。

本研究揭示了VIM-AS1通过表观遗传机制调控HCC侵袭性的新途径。确定了VIM-AS1和EPHA3在HCC进展中的重要作用,为HCC的治疗提供了新的靶点。并提供了基于表观遗传学的标志物,可能改善HCC的早期检测和预后评估。


参考文献:

Han SH, Ko JY, JungS, Oh S, Kim DY, Kang E, Kim MS, Chun KH, Yoo KH, Park JH. VIM-AS1, which isregulated by CpG methylation, cooperates with IGF2BP1 to inhibit tumoraggressiveness via EPHA3 degradation in hepatocellular carcinoma. Exp Mol Med.2024 Dec 2. pii: 10.1038/s12276-024-01352-6. doi: 10.1038/s12276-024-01352-6.PubMed PMID: 39617786.

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