新一代凝胶成像仪 Amersham ImageQuant 800来啦，其设计满足科研工作者实际需求，优化的光学系统和全新专利技术——SNOW™（最优化信噪比观察模式）检测模式可实现优化信噪比，帮助用户提高成像灵敏度和图像质量。
高灵敏度：ImageQuant 800搭载新研发的F0.74科研级定焦镜头，透镜玻璃材料透光率大幅提升，检测灵敏度进一步提高。
高分辨率：830万像素高分辨CCD、相邻条带的分辨能力更高
新成像模式：ImageQuant 800系统配备了SNOW成像模式，可以较短的曝光时间捕获多个图像，避免过曝，并实时优化图像，以减少背景噪声。
配置多样，功能全：可选择不同配置，进行化学发光成像、白光成像、RGB三色荧光成像和双色近红外成像等。新的样品盘设计及NP透镜的加入，使Amersham ImageQuant 800还可用于多孔板、培养皿等更多种类样品的图像采集和分析。
让我们看看近两年科研工作者都在哪些领域使用它：
聚糖荧光成像
2020年3月
马克斯普朗克生物物理化学研究所Vladimir N. Belov教授研究团队在《analytical chemistry》上发表文章《Negatively Charged Red-Emitting Acridine Dyes for Facile Reductive Amination, Separation, and Fluorescent Detection of Glycans》，该研究借助Amersham Imager 600RGB完成对多聚糖的荧光研究
DNA凝胶成像
2020年9月
上海交通大学于伟峰教授研究团队在《ACS NANO》上发表文章《Molecular Transport through a Biomimetic DNA Channel on Live Cell Membranes》，研究人员使用凝胶成像仪Amersham Imager 680对DNA 纳米孔进行成像表征。
2020年2月
华东理工大学尹彬成教授研究团队设计了DNA机器用于模拟适应性免疫反应 (AIR) 的操作和功能，并在《JACS》上发表文章《Multimachine Communication Network That Mimics the Adaptive Immune Response》，该研究使用Amersham Imager 680 成像仪对DNA进行凝胶成像分析。
蛋白质成像
2020年9月
荷兰莱顿大学医学中心Peter ten Dijke研究团队设计了可监测活细胞和斑马鱼胚胎中泛素C末端水解酶活性的小分子荧光探针，并在《JACS》上发表文章《Small-Molecule Activity-Based Probe for Monitoring Ubiquitin C-Terminal Hydrolase L1 (UCHL1) Activity in Live Cells and Zebrafish Embryos》，该研究使用 Amersham Imager 600进行探针对蛋白质检测的探索工作。
2021年5月
美国加州大学旧金山分校Trever G. Bivona研究团队在《Cell》上发表了《Kinase-mediated RAS signaling via membraneless cytoplasmic protein granules》，研究结果揭示了无膜的高阶细胞质蛋白组装是一个独特的亚细胞平台，用于组织致癌 RTK 和 RAS 信号,该研究使用ImageQuant LAS 4000进行免疫印迹。
RNA凝胶成像
2020年7月
美国约翰霍普金斯大学和伊利诺伊大学物理前沿中心等研究团队在《Nature Communications》上发表文章《R-loop induced G-quadruplex in non-template promotes transcription by successive R-loop formation》，研究表明，当位于转录起始位点的下游时，潜在 G-四链体（G4） 形成序列 (PQS) 的方向会改变转录输出，但不会改变序列，该研究借助Amersham imager 600凝胶成像仪对RNA和DNA进行成像分析。
参考文献：
1. Maksim A. Fomin, Jan Seikowski, et al. Negatively Charged Red-Emitting Acridine Dyes for Facile Reductive Amination, Separation, and Fluorescent Detection of Glycans Analytical Chemistry 2020 92 (7), 5329-5336 DOI: 10.1021/acs.analchem.9b05863
2. Cheng Lv, Xiyao Gu, et al. Molecular Transport through a Biomimetic DNA Channel on Live Cell Membranes ACS Nano 2020 14(11), 14616-14626 DOI: 10.1021/acsnano.0c03105
3. Pei-Qiang Ma, Qing Huang, et al. Multimachine Communication Network That Mimics the Adaptive Immune Response Journal of the American Chemical Society 2020 142(8), 3851-3861 DOI: 10.1021/jacs.9b11545
4. Raymond Kooij, Sijia Liu, et al. Small-Molecule Activity-Based Probe for Monitoring Ubiquitin C-Terminal Hydrolase L1 (UCHL1) Activity in Live Cells and Zebrafish Embryos Journal of the American Chemical Society 2020 142 (39), 16825-16841 DOI: 10.1021/jacs.0c07726
5. Asmin Tulpule, Juan Guan,et al. Kinase-mediated RAS signaling via membraneless cytoplasmic protein granules,Cell 2021 184(10), 2649-2664 doi.org/10.1016/j.cell.2021.03.031.
6. Lee, CY., McNerney, C., Ma, K. et al. R-loop induced G-quadruplex in non-template promotes transcription by successive R-loop formation. Nat Commun 11, 3392 (2020). doi.org/10.1038/s41467-020-17176-7
