Plant Biotechnology Journal | 碳点技术突破植物转化瓶颈!南京农业大学团队开发小麦基因组研究新工具

文章导读

发表单位:南京农业大学、苏州大学

发表期刊:Plant Biotechnology Journal

影响因子:10.1

发表时间:2025年2月19日

DOI:10.1111/pbi.14573


基因型限制对绝大多数植物物种的稳定转化构成了重大瓶颈,从而严重阻碍了植物生物工程的发展,尤其是作物。纳米颗粒(NPs)可以作为核酸瞬时递送的有效载体,以不依赖基因型的方式促进植物中的基因过表达或沉默。然而,NP 介导的瞬时系统在植物综合基因组研究中的应用仍未得到充分探索,尤其是在面临遗传转化挑战的作物中。因此,迫切需要高效的 NP 介导的递送系统,该系统能够产生具有均匀转化核酸的整株植物或幼苗。

最近,南京农业大学张文利教授团队联合苏州大学康振辉团队与黄健团队,在PlantBiotechnology Journal期刊上发表了题为”Modified carbon dot-mediated transient transformation for genomic and epigenomic studies in wheat”的论文。团队开发了一种简单高效的修饰碳点(MCD)介导的瞬时转化系统,用于将 DNA 质粒递送到小麦种子中,该系统也适用于其他植物物种。该系统有助于生成包含转移的 DNA 质粒的整株幼苗。研究表明,该系统是小麦进行功能基因组研究的绝佳平台,包括基因功能的验证、蛋白质相互作用和调控、组学研究和基因组编辑。MCD 兼具环境友好性和跨物种适用性,为作物功能基因组研究和遗传改良提供了创新工具,有望推动植物生物技术领域的跨越式发展。

研究内容

团队对改良碳点(MCD)介导的小麦及其他植物物种的瞬时转化进行了研究,将新合成的改良碳点(MCD)与含潮霉素抗性基因及 LUC/GFP/GUS 报告基因的 DNA 质粒混合,处理多种小麦品种种子。结果显示(图1),转化后的小麦幼苗在两叶期无显著表型变化,表明 MCD 处理不影响种子萌发和幼苗生长。全株检测到清晰的 LUC/GFP 信号,且信号强度在第 4–8 天保持较强水平,第 10 天显著减弱,提示质粒 DNA 随时间降解。此外,MCD 介导的转化系统在玉米、大豆、黄瓜等 8 种难转化植物中均有效,证实其跨物种适用性。分子水平验证显示,目标基因(SAMMT、NLR1)的转录和蛋白表达水平显著升高,确认 MCD 可高效递送 DNA 并实现瞬时表达。


图1 利用不同小麦品种种子进行的MCD介导的瞬时转化

之后,团队使用该系统进行了蛋白质与蛋白质或顺式调控元件互作的验证,结果显示(图2),通过双分子荧光互补(BiFC)和分裂荧光素酶(Split-LUC)实验,证实小麦 TaHAG1 与 TaBZR1、棉花 Rf2b 与 PRE6 的物理互作,荧光信号定位于细胞核。免疫共沉淀(Co-IP)进一步验证 TaSG1 与 TaSIP2/3/4 的体内互作。在顺式调控元件分析中,Rf2b 与 PRE6 启动子共转化后 LUC 信号显著增强,证实转录因子对靶基因的激活作用。此外,白粉菌诱导型增强子在病原菌接种后,GFP 信号和基因表达水平显著上调,表明该系统可有效验证诱导型调控元件活性。

图2 使用MCD介导的种子瞬时转化系统研究蛋白质与其他蛋白质或顺式调控元件的相互作用

团队还利用该系统对候选基因在生物或非生物抗性中功能进行验证(图3),过表达抗病基因 NLR1 和已知抗病基因 Pm21 的小麦幼苗,对白粉病(E26)表现出显著抗性,病原菌孢子形成受抑制;过表达bHLH基因的植株对镰刀菌抗性增强,茎部褐变减轻。在抗逆性验证中,HSF1 过表达株在40℃高温胁迫下正常生长,而HSF2过表达株出现萎蔫,揭示两者在耐热性中的拮抗作用。发芽率实验显示,基因过表达不影响种子萌发,排除转化处理对生长的干扰。

图3 利用 MCD 介导的种子瞬时转化系统对生物或非生物抗性候选基因的功能验证

团队还利用该系统进行了免疫共沉淀和染色质免疫共沉淀分析(图4),免疫共沉淀(Co-IP)实验通过抗 HIS/FLAG 抗体,成功共沉淀 TaSG1 与 TaSIP2/3/4 蛋白复合物,证实其体内物理互作。染色质免疫共沉淀测序(ChIP-seq)显示,过表达组蛋白突变体 H3K4M 导致全基因组 H3K4me3 修饰水平显著下降,修饰峰在基因间区分布比例增加(25% vs. 24%),外显子分布减少(44% vs. 46%)。共鉴定出 17,773(H3K4M-OE)和 35,483(CK)个 H3K4me3 峰,其中 8,671 个峰共享,揭示表观遗传调控的全局变化。


图4 利用 MCD 介导的瞬时转化系统进行的免疫共沉淀和染色质免疫共沉淀分析。

最后,团队还利用MCD联合基因枪递送 CRISPR-Cas9 质粒至小麦种子,靶向 NLR1/NLR2 基因的突变率最高达 11.66%(碱基插入 / 缺失),而单独使用 MCD 时突变率较低(2.87%–7.02%)。基因枪处理显著提升大片段缺失突变频率,但整体编辑效率仍较低,且突变多为瞬时性,未检测到可遗传编辑。结果表明,MCD 系统在基因组编辑中具有潜力,但需进一步优化递送策略以提高效率和稳定性(图5)。


图5 利用 MCD 介导的瞬时转化系统,通过 Hi-TOM 技术检测基于 CRISPR-Cas9 的基因组编辑效率

研究总结

本研究开发了改良碳点(MCD)介导的瞬时转化系统,通过种子处理将 DNA 质粒高效递送入小麦等多种植物细胞,实现全幼苗基因瞬时表达。结合双分子荧光互补(BiFC)、免疫共沉淀(Co-IP)等技术,表明该系统可快速验证抗病(如NLR1、Pm21)和抗逆(如 HSF1)基因功能,解析蛋白互作(如 TaHAG1-TaBZR1)及顺式调控元件活性,并通过 ChIP-seq 分析表观遗传修饰(如 H3K4me3)变化。结合 CRISPR-Cas9 系统,利用 Hi-TOM 技术检测到基因组编辑突变率提升(最高 11.66%),但仍以瞬时转化为主。研究表明,MCD 系统突破了传统转化的基因型限制,为植物功能基因组、表观基因组研究及作物抗逆改良提供了高效、环境友好的新工具,尽管基因组编辑效率仍需优化,但其跨物种适用性和操作简便性有望显著推动植物生物技术的发展。

©著作权归作者所有,转载或内容合作请联系作者
平台声明:文章内容(如有图片或视频亦包括在内)由作者上传并发布,文章内容仅代表作者本人观点,简书系信息发布平台,仅提供信息存储服务。

推荐阅读更多精彩内容