使用浓度说明
储备液浓度0.1mg/mL，即100ng/uL；
诱导BMDM时，10cm培养皿中的培养基体积为10mL，M-CSF浓度为20ng/mL，因此要加2uL的M-CSF
1次实验，要做1只野生型小鼠，1只突变型小鼠，每只小鼠用2个10cm的培养皿，每个培养皿用10mL的DMEM培养基，因此储备液要分装在EP管中，每管分装8uL，1次用掉1个EP管。
以10ug的量为例说明分装方案（参照其说明书进行）：
Catalog # 315-02
Lot# 0914245
以下的官网的溶解方法：
细胞因子溶解方法
PeproTech细胞因子中不含载体蛋白（Carrier Protein）或其他添加剂（如BSA、HAS或蔗糖等），并且通常以最少量的盐来进行冻干处理，因此微量的细胞因子在冻干过程中会沉积于管内，形成很薄或不可见的蛋白层。所以我们建议在收到产品后，务必在开盖前先离心，使粘在管盖或管壁上的蛋白聚集于管底（此时能否见到白色沉淀均属正常现象）。
1．离心：高速离心 (10, 000 rpm) 20-30 秒，或低速离心 (2, 000 rpm) 5 分钟。
2．溶解（Reconstitution）：用去离子水或其它缓冲液（根据说明书要求进行选择）溶解至说明书要求的浓度 (一般为 0.1-1.0 mg/mL，如10ug的产品，需用10uL-100uL的去离子水或缓冲液溶解)。溶解时不可振荡，避免因化学键的断裂造成蛋白失活，可加入适当的溶剂轻摇并静置一段时间，待细胞因子完全溶解后使用。溶剂的选择：
要求用去离子水溶解的产品，务必不可用盐溶液，避免过高的盐浓度造成蛋白不可逆的析出；
要求用盐溶液溶解的产品，请依照说明书上的浓度，同样也是为了避免过高的盐浓度。
- 分装和贮存（Aliquot and Storage）：蛋白溶解后可根据自己的实验需要进一步稀释成工作液，稀释可用RPMI 1640、DMEM或PBS等溶液，其中最好含有5-10%的FCS （小牛或胎牛血清）或0.5 %的BSA（牛血清白蛋白）来稳定蛋白。工作液在4℃可保存1周，如需长期保存，则需分装冻存于-20℃ （注意：不可冻存于-80℃）。分装时每管中工作液的体积最好是一次实验的用量，以实现每次实验用完一只工作液，避免反复冻融引起蛋白活性的降低。
分装注意事项：
用100uL的去离子水充分溶解，浓度即为100ng/uL（溶解前先离心样品，使粉末沉积在底部）；
然后在每个EP管中装8uL;
1次实验，要做1只野生型小鼠，1只突变型小鼠，每只小鼠用2个10cm的培养皿，每个培养皿用10mL的DMEM培养基，因此1次实验（第1次加M-CSF），1个培养皿中是加入2uL的储备液（2uL含200ng rM-CSF，培养基的浓度就为20ng/mL)；4个培养皿就用掉8uL；第2次的换液的时候，用20mL的培养基，培基的rM-CSF浓度为40ng/mL，对每个培养皿进行半数换液，即去掉原来培养皿（原培养皿是10mL)一半的培养基（5mL),加入含40ng/mL rM-CSF的5mL培养基。
