软件的安装
Python版McScan（jcvi工具包）：https://github.com/tanghaibao/jcvi
以前只有python2，现在已有python3版本，建议用py3。安装可用pip：
pip install jcvi
##或开发版
pip install git+git://github.com/tanghaibao/jcvi.git
pip可能会安装很慢。建议还是用conda，要快很多，最好新建环境。
conda install -c bioconda jcvi
这时，你已经能使用命令，表面上安装成功了，实际上可能还缺少很多依赖。比如last，latex，dvipng等。否则在后面运行过程，可能遇到如下错误：
##未安装last
/bin/bash: lastdb: command not found
##未安装latex、dvipng
RuntimeError: Failed to process string with tex because latex could not be found
只有一个个解决，有的可以直接conda（如last），有些则需要编译，若有root权限，倒也好办。
conda install -c bioconda last
sudo yum install -y texlive texlive-latex texlive-xetex texlive-collection-latexrecommended
sudo yum install dvipng
基因组的准备
若是已知物种，直接可从公共数据库中下载gff和cds序列，jcvi提供了下载方式：
$ python -m jcvi.apps.fetch
Usage:
python -m jcvi.apps.fetch ACTION
Available ACTIONs:
bisect | Determine the version of the accession by querying entrez
ensembl | Retrieve genomes and annotations from ensembl
entrez | Fetch records from entrez using a list of GenBank accessions
phytozome | Retrieve genomes and annotations from phytozome
phytozome9 | Retrieve genomes and annotations from phytozome version 9.0 (legacy)
sra | Retrieve files from SRA via the sra-instant FTP
比如从Phytozome下载，要提前注册好，如下命令提示输入账号密码。
python -m jcvi.apps.fetch phytozome Vvinifera,Ppersica
下载后无需解压。
自己准备的基因组数据也只需gff3和cds.fa（蛋白序列也可）。
gff3只保留染色体水平的ID，如：
grep '^chr' Vvinifera_145_Genoscope.12X.gene.gff3 > apricot.filter.gff3
gff3文件转化bed文件时注意type和key类型对应gff中第三列和第九列信息。type一般为mRNA，但是key注意你的gff文件是取Name还是ID。如：
python -m jcvi.formats.gff bed --type=mRNA --key=Name Vvinifera_145_Genoscope.12X.gene.gff3 -o grape.bed
python -m jcvi.formats.gff bed --type=mRNA --key=ID Ppersica_298_v2.1.gene.gff3 -o peach.bed
若后续作图仍报错，可尝试去除fasta ID中多余的描述信息（我自己不用也可跑通）。如：
# clean headers to remove description fiedls from Phytozome FASTA files.
python -m jcvi.formats.fasta format --sep="|" Vvinifera_145_cds.fa.gz grape.cds
python -m jcvi.formats.fasta format --sep="|" Ppersica_139_cds.fa.gz peach.cds
一些细节
结果文件
last比对结果，last.filtered比对过滤串联重复和低分比对结果，anchors: 高质量的共线性块，lifted.anchors增加额外锚点的最终共线性区块，simple简化的anchors文件。anchors文件中每个共线性区块以###分隔, 第一和第二列分别是两基因组的基因ID，第三列BLAST的bit score，越大可靠性越高。调图细节
两个配置文件seqid（展示染色体），layout（序列位置）。
seqid文件中，基因组的染色体编号与其gff3文件一致（按大小顺序写，而非gff文件染色体顺序，转化bed时软件会排序）。如：
chr1,chr2,chr3,chr4,chr5,chr6,chr7,chr8,chr9,chr10,chr11,chr12,chr13,chr14,chr15,chr16,chr17,chr18,chr19
Pp01,Pp02,Pp03,Pp04,Pp05,Pp06,Pp07,Pp08
layout文件绘制一些选项，若要个性化，多多修改尝试（尤其时三个物种比较时）。如：
# y, xstart, xend, rotation, color, label, va, bed
.6, .1, .8, 0, red, Grape, top, grape.bed
.4, .1, .8, 0, blue, Peach, bottom, peach.bed
# edges
e, 0, 1, grape.peach.anchors.simple
若要突出显示某一共线性区块，可以在anchors.simple文件对应的区块前添加g*（g代表绿色，也可以改成其他颜色，如红色r）。
建议和示例
建议先用示例数据跑一遍，也很快。再换自己的数据，报错对照着寻找原因，总能解决。
示例代码：
# 准备数据（输入帐号密码）
python -m jcvi.apps.fetch phytozome Vvinifera,Ppersica
#去掉chr以外的序列
grep '^chr' Vvinifera_145_Genoscope.12X.gene.gff3 > apricot.filter.gff3
#gff convert to bed
python -m jcvi.formats.gff bed --type=mRNA --key=Name Vvinifera_145_Genoscope.12X.gene.gff3 -o grape.bed
python -m jcvi.formats.gff bed --type=mRNA --key=Name Ppersica_298_v2.1.gene.gff3 -o peach.bed
#reformat fasta
python -m jcvi.formats.fasta format Vvinifera_145_Genoscope.12X.cds.fa.gz grape.cds
python -m jcvi.formats.fasta format Ppersica_298_v2.1.cds.fa.gz peach.cds
#identify blocks
python -m jcvi.compara.catalog ortholog grape peach --no_strip_names
#plot dotplot
python -m jcvi.graphics.dotplot grape.peach.anchors
# get synteny
python -m jcvi.compara.synteny screen --minspan=30 --simple grape.peach.anchors grape.peach.anchors.new
##prepare for seqid and layout file
# plot synteny
python -m jcvi.graphics.karyotype seqid layout
Ref：
https://www.jianshu.com/p/a748d3a5421d
https://www.cnblogs.com/zhanmaomao/p/12525411.html
https://sr-c.github.io/2019/01/11/jcvi-MCscan/
